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电泳技术

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好的,电泳技术是一种利用带电粒子(分子或颗粒)在电场中向着与其所带电荷相反电极方向移动的速度不同,从而对混合物进行分离、分析和鉴定的技术

它的核心原理基于以下几点:

  1. 电荷: 待分离的分子(如蛋白质、DNA、RNA等)在特定的溶液环境中会带有净的正电荷或负电荷。电荷的来源可以是分子本身的基团电离(如蛋白质的氨基和羧基),也可以是在电泳缓冲液中的状态(如DNA在常规缓冲液中带负电)。
  2. 电场: 在电泳装置的两端施加直流电压,形成一个稳定的电场。
  3. 迁移: 带电分子在电场力的驱动下,会向与其所带电荷极性相反的电极方向迁移(带负电的分子向阳极移动,带正电的分子向阴极移动)。
  4. 分离基础: 混合物中不同分子迁移的速度(迁移率) 不同。影响迁移速度的关键因素包括:
    • 电荷量: 所带净电荷越多,受到的电场力越大,迁移越快。
    • 分子大小与形状: 在自由溶液中,小分子受到的阻力小,迁移快;大分子受到的阻力大,迁移慢。形状也会影响流体阻力。
    • 电场强度: 电压越高,电场越强,分子迁移越快。
    • 介质(凝胶/溶液)的性质: 这是最常用的分离机制。
      • 凝胶电泳: 最常用。将待测样品加入多孔介质(如琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶)中。凝胶像一个分子筛,大分子在孔隙中移动困难,迁移慢;小分子移动容易,迁移快。这样,分子不仅根据电荷,更主要地是根据其大小(分子量) 得到分离。凝胶浓度越高,孔径越小,分离小分子的分辨率越高。
      • 自由溶液电泳: 如毛细管电泳(CE),分离主要基于分子的荷质比(电荷/质量比)

电泳技术的主要类型和应用:

  1. 琼脂糖凝胶电泳:
    • 介质: 琼脂糖凝胶(孔径较大)。
    • 主要应用: 分离、鉴定和纯化DNARNA片段(如PCR产物、酶切产物)。常用于分子生物学实验(如克隆、Southern/Northern blotting)、DNA指纹图谱分析、亲子鉴定、病原体检测等。可以依据DNA标准分子量Marker估计未知片段的大小。
  2. 聚丙烯酰胺凝胶电泳:
    • 介质: 聚丙烯酰胺凝胶(PAGE,孔径较小且可精确调控)。
    • 主要应用:
      • 非变性PAGE: 分离蛋白质时保持其天然结构和活性,分离基于电荷、大小和形状。
      • 变性SDS-PAGE: 最常用。加入阴离子表面活性剂十二烷基硫酸钠(SDS) 和还原剂(如巯基乙醇)。SDS使蛋白质变性并带上大量负电荷,屏蔽了蛋白质原有的电荷差异;还原剂破坏二硫键。这样,蛋白质的迁移率几乎只取决于其分子量。是蛋白质组学、生物化学中分离、鉴定蛋白质、测定蛋白质分子量的金标准技术。常作为Western Blotting(免疫印迹)的第一步。
      • DNA测序: 高分辨率的PAGE用于经典的桑格法DNA测序。
  3. 等电聚焦:
    • 原理: 在凝胶中建立一个稳定的pH梯度。蛋白质在电场中迁移,当迁移到其等电点(pI,净电荷为零)的pH位置时,电荷为零,停止迁移。从而实现高分辨率地分离不同等电点的蛋白质。
    • 应用: 主要用于蛋白质分析,特别是二维电泳(2D-PAGE)的第一维。
  4. 二维电泳:
    • 原理: 结合了等电聚焦(第一维,按pI分离)和SDS-PAGE(第二维,按分子量分离)。
    • 应用: 复杂蛋白质混合物(如全细胞裂解液)的高分辨率分离和分析,是蛋白质组学研究的核心技术之一。
  5. 毛细管电泳:
    • 介质: 在细长的毛细管(内径通常25-100微米)中填充缓冲液或凝胶。
    • 原理: 高电场强度下,在自由溶液或稀凝胶中进行高效快速分离。分离基于荷质比(电荷/大小)。检测器(如紫外、荧光)直接安装在毛细管末端。
    • 应用: 高效、快速、自动化、样品用量少。广泛应用于DNA测序(现代高通量测序仪的基础)、片段分析、蛋白质分析、小分子离子和药物分析、手性拆分等。
  6. 免疫电泳:
    • 原理: 将电泳分离(通常是琼脂糖凝胶)与免疫沉淀反应相结合。
    • 应用: 用于检测和分析血清或体液中的特定抗原(如免疫球蛋白、补体成分),辅助疾病诊断(如多发性骨髓瘤)。

电泳过程简述:

  1. 制胶: 根据分离对象选择合适的凝胶类型(琼脂糖或聚丙烯酰胺)和浓度,制备凝胶板。
  2. 加样: 将待测样品与加样缓冲液(含指示染料和增加密度的物质)混合,用微量移液器加入凝胶上的加样孔中。
  3. 电泳: 将凝胶放入装有缓冲液的电泳槽中,连接电源,施加合适的电压(通常几十到几百伏)。
  4. 迁移: 带电分子在电场作用下向相应电极移动。指示染料(如溴酚蓝)随前沿移动,指示电泳进程。
  5. 终止与染色: 当指示染料迁移到接近凝胶末端时,停止电泳。取出凝胶进行染色(如核酸用溴化乙锭EB或更安全的替代染料,蛋白质用考马斯亮蓝或银染)或转膜(如用于Western Blotting)。
  6. 检测与分析: 在紫外灯下观察核酸条带或用成像系统拍摄记录。对于蛋白质染色胶,用成像系统拍摄分析条带的位置、大小和强度。通过与已知分子量标准(Marker)比较,可以估算未知分子的分子量或分析其组成。

总结来说,电泳技术是生物化学、分子生物学、遗传学、医学诊断、法医学等领域不可或缺的基础实验技术,它利用电场驱动和介质筛分效应,高效、简便地实现了对带电生物大分子(尤其是核酸和蛋白质)的分离、分析和鉴定。

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